本试剂盒仅供研究使用
检测范围：78 pg/ml -5,000 pg/ml
特异性：本试剂盒可检测大鼠的IGF-1，且与其它相关蛋白无交叉反应。
有效期：6个月
预期应用：ELISA法定量测定大鼠血清、细胞培养物上清或其它相关液体中IGF-1含量。

说明
1．试剂盒保存：-20℃（较长时间不用时）；2-8℃（频繁使用时）。
2．浓洗涤液低温保存会有盐析出，稀释时可在水浴中加温助溶。
3．中、英文说明书可能会有不一致之处，请以英文说明书为准。
4．刚开启的酶联板孔中可能会含有少许水样物质，此为正常现象，不会对实验结果造成任何影响。 
概述
胰岛素样生长因子 1（Insulin likegrowthfactor1,IGF-1）,又称生长激素刺激素c，是一种相对分子质量为7600

的单链非糖多肽。zui先发现它的功能是其能调节体细胞生长，后又发现它是一种重要的细胞生长,分化过程

中的调节蛋白。在哺乳动物中，成熟的IGF-1结构相当保守，在大鼠、猪、牛以及犬类动物中其蛋白质结构

100%相同。IGF-1主要由肝脏分泌，以与IGFBP组成结合物的形式存在于血液和其它体液中。
实验原理
本试剂盒应用双抗体夹心酶标免疫分析法测定标本中IGF-1水平。用纯化的抗体包被微孔板，制成固相抗体

，往包被单抗的微孔中依次加入IGF-1抗原、生物素化的抗大鼠IGF-1抗体、HRP标记的亲和素，经过*洗

涤后用底物TMB显色。TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成zui终的黄色。颜色

的深浅和样品中的IGF-1呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），计算样品浓度。
试剂盒组成及试剂配制
1.酶联板：一块（96孔）
2.标准品（冻干品）：2瓶。
3.样品稀释液：1×20ml/瓶。
4.检测稀释液A：1×10ml/瓶。
5.检测稀释液B：1×10ml/瓶。
6.检测溶液A：1×120ul/瓶（1：100）
7.检测溶液B：1×120ul/瓶（1：100）
8.底物溶液：1×10ml/瓶。
9.浓洗涤液：1×30ml/瓶，使用时每瓶用蒸馏水稀释25倍。
10.终止液：1×10ml/瓶（2N H2SO4）。

需要而未提供的试剂和器材
1.标准规格酶标仪。
2.高速离心机。
3.电热恒温培养箱
4.干净的试管和Eppendof管
5.系列可调节移液器及吸头，一次检测样品较多时，用多通道移液器。
6.蒸馏水，容量瓶等。
标本的采集及保存
1．细胞培养物上清：请离心后收集上清，并将标本保存于-20℃，且应避免反复冻融。
2．血清：标本请于室温放置2小时或4℃过夜后于1000 x g离心20分钟，取上清即可检测，或将标本放于-

20℃保存，但应避免反复冻融。
3．血浆：可用EDTA或肝素作为抗凝剂，在采血后30分钟内1000 x g离心20分钟，取上清即可检测，或将

标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融。
注：标本溶血会影响zui后检测结果，因此溶血标本不宜进行此项检测。
标本的稀释原则：
首先通过文献检索的方式了解待测样本的大致含量，确定适当的稀释倍数。只有稀释至标准曲线的范围内

，检测的结果才是准确的。稀释的过程中，应做好详细的记录。zui后计算浓度时，稀释了“N”倍，标本的浓

度应再乘以“N”。
标准品的稀释原则：每瓶标准品临用前以样品稀释液稀释至1ml，盖好后静置10分钟以上，然后反复颠倒/

搓动以助溶解，其浓度为10,000 pg/mL，做系列倍比稀释后，分别稀释成5,000 pg/mL，2,500 pg/mL，

1,250 pg/mL，625 pg/mL，312 pg/mL，156 pg/mL，78 pg/mL，样品稀释液直接作为标准浓度0

pg/mL，临用前15分钟内配制。
检测溶液A的稀释原则：
临用前以检测溶液A稀释液稀释，稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制（每孔100ul），实际

配制时应多配制0.1-0.2ml。如10ul检测溶液A加990ul检测稀释液A的比例配制，轻轻混匀，在使用前一小

时内配制。
检测溶液B的稀释原则：
临用前以检测溶液B稀释液稀释，稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制（每孔100ul），实际

配制时应多配制0.1-0.2ml。如10ul检测溶液A加990ul检测稀释液A的比例配制，轻轻混匀，在使用前一小

时内配制。
操作步骤
实验开始前，请提前配置好所有试剂，试剂或样品稀释时，均需混匀，混匀时尽量避免起泡。每次检测都

应该做标准曲线。如样品浓度过高时，用样品稀释液进行稀释，以使样品符合试剂盒的检测范围。
1.加样：分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释液100ul，余孔分别加标准品或

待测样品100ul，注意不要有气泡，加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀，酶标

板加上盖或覆膜，37℃反应120分钟。
为保证实验结果有效性，每次实验请使用新的标准品溶液。
2.弃去液体，甩干，不用洗涤。每孔加检测溶液A工作液 100ul（取1ul检测溶液A加99ul检测稀释

液A的比例配制，轻轻混匀，在使用前一小时内配制），37℃,60分钟。
3.温育60分钟后，弃去孔内液体，甩干，洗板3次，每次浸泡1-2分钟，350ul/每孔，甩干。
4.每孔加检测溶液B工作液（同检测A工作液） 100ul，37℃，60分钟。
5.温育60分钟后，弃去孔内液体，甩干，洗板5次，每次浸泡1-2分钟，350ul/每孔，甩干。
6.依序每孔加底物溶液90ul，37℃避光显色（30分钟内，此时肉眼可见标准品的前3-4孔有明显的

梯度兰色，后3-4孔梯度不明显，即可终止）。
7.依序每孔加终止溶液50ul，终止反应（此时蓝色立转黄色）。终止液的加入顺序应尽量与底物液

的加入顺序相同。为了保证实验结果的准确性，底物反应时间到后应尽快加入终止液。
8.用酶联仪在450nm波长依序测量各孔的光密度（OD值）。 在加终止液后15分钟以内进行检测。
注：
1.用户在初次使用试剂盒时，应将各种试剂管离心数分钟，以便试剂集中到管底。
2. 每次实验留一孔作为空白调零孔，该孔不加任何试剂，只是zui后加底物溶液及2NH2SO4。测量时先用

此孔调OD值至零。
3.为防止样品蒸发，试验时将反应板放于铺有湿布的密闭盒内，酶标板加上盖或覆膜。
4. 未使用完的酶标板或者试剂，请于2-8℃保存。标准品、检测溶液A工作液、检测溶液B工作液请依据所

需的量配置使用。请勿重复使用已稀释过的标准品、检测溶液A工作液或检测溶液B工作液。
5. 建议检测样品时均设双孔测定，以保证检测结果的准确性。
洗板方法
手工洗板方法：吸去（不可触及板壁）或甩掉酶标板内的液体；在实验台上铺垫几层吸水纸，酶标板朝下

用力拍几次；将推荐的洗涤缓冲液至少0.3ml注入孔内，浸泡1-2分钟。根据需要，重复此过程数次。
自动洗板：如果有自动洗板机，应在熟练使用后再用到正式实验过程中。
计算
以标准物的浓度为横坐标（对数坐标），OD值为纵坐标（普通坐标），在半对数坐标纸上绘出标准曲线，

根据样品的OD值由标准曲线查出相应的浓度；再乘以稀释倍数；或用标准物的浓度与OD值计算出标准曲线

的直线回归方程式，将样品的OD值代入方程式，计算出样品浓度，再乘以稀释倍数，即为样品的实际浓度

。
注意事项
1. 当混合蛋白溶液时应尽量轻缓，避免起泡。
2. 洗涤过程非常重要，不充分的洗涤易造成假阳性。
3. 一次加样时间控制在5分钟内，如标本数量多，推荐使用排枪加样。
4. 请每次测定的同时做标准曲线，做复孔。
5. 如标本中IGF-I含量过高，请先稀释后再测定，计算时请zui后乘以稀释倍数。
6. 在配制标准品、检测溶液工作液时，请以相应的稀释液配制，不能混淆。
7. 底物请避光保存。
8. 不要用其它生产厂家的试剂替换试剂盒中的试剂。